Ⅰ．原著論文(#はequal first, *はcorresponding author)

2024年

1. Noda T#,*, Shinohara S#, Kobayashi S, Taira A, Oura S, Tahala D, Tokuyasu M, Araki K, Ikawa M*. Multiple genes in the Pate5-13 genomic region contribute to ADAM3 processing. Biology of Reproduction  110, 750-760 (2024). DOI: 10.1093/biolre/ioae008. 

2023年

1. Noda T#,*, Taira A#, Shinohara H, Araki K. The testis-, epididymis-, or seminal vesicle-enriched genes Aldoart2, Serpina16, Aoc1l3, and Pate14 are not essential for male fertility in mice. Experimental Animals 72, 314-323 (2023). DOI: 10.1538/expanim.22-0158. ♦表紙に選ばれました   　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　
2. Iida-Norita R, Miyata M, Kaneda Y, Emori C, Noda T, Nakagawa T, Matzuk MM, Ikawa M. Generation of humanized LDHC knock-in mice as a tool to assess human LDHC-targeting contraceptive drugs. Andrology 11, 840-848 (2023). DOI: 10.1111/andr.13359.                  　　　　　　　　　　　　 
3. Kiyozumi D, Shimada K, Chalick M, Emori C, Kodani M, Oura S, Noda T, Endo T, Matzuk MM, Wreschner DH, Ikawa M. A small secreted protein NICOL regulates lumicrine-mediated sperm maturation and male fertility. Nature Communications 14, 2354 (2023). DOI: 10.1038/s41467-023-37984-x                                       
4. Shimada K, Park S, Oura S, Noda T, Morohoshi A, Matzuk MM, Ikawa M. TSKS localizes to nuage in spermatids and regulates cytoplasmic elimination during spermiation. Proc Natl Acad Sci 120, e2221762120 (2023). DOI: 10.1073/pnas.2221762120.                                                                                   
5. Lu Y, Shimada K, Tang S, Zhang J, Ogawa Y, Noda T, Shibuya H, Ikawa M. 1700029I15Rik orchestrates the biosynthesis of acrosomal membrane proteins required for sperm-egg interaction. Proc Natl Acad Sci 120, e2207263120 (2023). DOI:10.1073/pnas.2207263120.                                                                                                 
6. Morohoshi A, Miyata H, Tokuhiro K, Iida-Norita R, Noda T, Fujihara Y, Ikawa M. Testis-enriched ferlin, FER1L5, is required for Ca 2+ -activated acrosome reaction and male fertility. Science Advances 9, eade7607 (2023). DOI: 10.1126/sciadv.ade7607.                                                                           

2022年　　　　                                                                                                                                                     

1. Oura S, Hino T, Satoh T, Noda T, Koyano T, Isotani A, Matsuyama M, Akira S, Ishiguro KI, Ikawa M. Trim41 is required to regulate chromosome axis protein dynamics and meiosis in male mice. PLoS Genet 18, e1010241 (2022). DOI: 10.1371/journal.pgen.1010241                                                                                    
2. Noda T, Blaha A, Fujihara Y, Gert KR, Emori C, Deneke VE, Oura S, Panser K, Lu Y, Berent S, Kodani M, Cabrera-Quio LE, Pauli A, Ikawa M. Sperm membrane proteins DCST1 and DCST2 are required for sperm-egg interaction in mice and fish. Commun Biol 5, 332 (2022).  DOI: 10.1038/s42003-022-03289-w      
3. Matsumura T, Noda T, Satouh Y, Morohoshi A, Yuri S, Ogawa M, Lu Y, Isotani A, Ikawa M. Sperm IZUMO1 Is Required for Binding Preceding Fusion With Oolemma in Mice and Rats. Front Cell Dev Biol 9, 810118 (2022). DOI: 10.3389/fcell.2021.810118                        　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　

2021年                                                                                                                                                         

1. Morohoshi A, Miyata H, Oyama Y, Oura S, Noda T, Ikawa M. FAM71F1 binds to RAB2A and RAB2B and is essential for acrosome formation and male fertility in mice. Development 148, dev199644 (2021).  DOI: 10.1242/dev.199644                                                                                                                                       
2. Zhang X, Sun J, Lu Y, Zhang J, Shimada K, Noda T, Zhao S, Koyano T, Matsuyama M, Zhou S, Wu J, Ikawa M, Liu M. LRRC23 is a conserved component of the radial spoke that is necessary for sperm motility and male fertility in mice. J Cell Sci 134, jcs259381 (2021).  DOI: 10.1242/jcs.259381                                                
3. Oura S#, Noda T#, Morimura N, Hitoshi S, Nishimasu H, Nagai Y, Nureki O, Ikawa M. Precise CAG repeat contraction in a Huntington’s Disease mouse model is enabled by gene editing with SpCas9-NG. Commun Biol 4, 771 (2021). DOI:  10.1038/s42003-021-02304-w                                                                                            
4. Qu Y, Chen Q, Guo S, Ma C, Lu Y, Shi J, Liu S, Zhou T, Noda T, Qian J, Zhang L, Zhu X, Lei X, Cao Y, Li W, Li W, Plachta N, Matzuk MM, Ikawa M, Duan E, Zhang Y, Wang H. Cooperation-based sperm clusters mediate sperm oviduct entry and fertilization. Protein & Cell 12, 810-817 (2021).            　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　       

2020年                                                   

1. Kim CR#, Noda T#, Kim H, Kim G, Park S, Na Y, Oura S, Shimada K, Bang I, Ahn JY, Kim YR, Oh SK, Choi HJ, Kim JS, Jung I, Lee H, Okada Y,  Ikawa M, Baek SH.   PHF7 Modulates BRDT Stability and Histone-to-Protamine Exchange during Spermiogenesis. Cell Rep 32, 107950 (2020).                                          
2. Akıncılar SH, Wu L, Ng QF, Chua JYH, Unal B, Noda T, Chor WHJ, Ikawa M, Tergaonkar V. NAIL: an evolutionarily conserved lncRNA essential for licensing coordinated activation of p38 and NFκB in colitis. Gut 70, 1857-1871, (2020).                                                                                                                       
3. Liu C, Miyata H, Gao Y, Sha Y, Tang S, Xu Z, Whitfield M, Patrat C, Wu H, Dulioust E, Tian S, Shimada K, Cong J, Noda T, Li H, Morohoshi A, Cazin C, Kherraf ZE, Arnoult C, Jin L, He X, Ray PF, Cao Y, Touré A, Zhang F, Ikawa M. Bi-allelic DNAH8 Variants Lead to Multiple Morphological Abnormalities of the Sperm Flagella and Primary Male Infertility. Am J Hum Genet 107, 330-341 (2020).                                                                     
4. Sun J, Lu Y, Nozawa K, Xu Z, Morohoshi A, Castaneda JM, Noda T, Miyata H, Abbasi F, Shawki HH, Takahashi S, Devlin DJ, Yu Z, Matzuk RM, Garcia TX, Matzuk MM, Ikawa M. CRISPR/Cas9-based genome editing in mice uncovers 13 testis- or epididymis-enriched genes individually dispensable for male reproduction. Biol Reprod, 103, 183-194 (2020).                                                                                                          
5. Larasati T#, Noda T#, Fujihara Y, Shimada K, Tobita T, Yu Z, Matzuk MM, Ikawa M. Tmprss12 is required for sperm motility and uterotubal junction migration in mice. Biol Reprod, 103, 254-263 (2020).                       
6. Kiyozumi D, Noda T, Yamaguchi R, Tobita T, Matsumura T, Shimada K, Kodani M, Kohda T, Fujihara Y, Ozawa M, Yu Z, Miklossy G, Bohren KM, Horie M, Okabe M, Matzuk MM, Ikawa M. NELL2-mediated lumicrine signaling through OVCH2 is required for male fertility. Science, 368, 1132-1135 (2020).                           
7. Noda T#, Lu Y#, Fujihara Y, Oura S, Koyano T, Kobayashi S, Matzuk MM, Ikawa M. Sperm proteins SOF1, TMEM95, and SPACA6 are required for sperm-oocyte fusion in mice. Proc Natl Acad Sci, 117, 11493-11502 (2020).                                                                                                                                                                                  
8. Fujihara Y, Lu Y, Noda T, Oji A, Larasati T, Kojima-Kita K, Yu Z, Matzuk RM, Matzuk MM, Ikawa M.　Spermatozoa lacking fertilization influencing membrane protein (FIMP) fail to fuse with oocytes in mice. Proc Natl Acad Sci, 117, 9393-9400 (2020).                                                                                                                 
9. Shimizu A, Zankov DP, Sato A, Komeno M, Toyoda F, Yamazaki S, Makita T, Noda T, Ikawa M, Asano Y, Miyashita Y, Takashima S, Morita H, Ishikawa T, Makita N, Hitosugi M, Matsuura H, Ohno S, Horie M, Ogita H. Identification of transmembrane protein 168 mutation in familial Brugada syndrome.  FASEB J, 34, 6399-6417 (2020).       　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　

2019年                                                                                                                                                                      

1. Matsumura T#, Noda T#, Muratani M, Okada R, Yamane M, Isotani A, Kudo T, Takahashi S, Ikawa M. Male mice, caged in the International Space Station for 35 days, sire healthy offspring. Sci Rep, 9, 1-8 (2019).       
2. Fujihara Y#, Noda T#, Kobayashi K#, Oji A, Kobayashi S, Matsumura T, Larasati T, Oura S, Kojima-Kita K, Yu Z, Matzuk MM, Ikawa M. Identification of multiple male reproductive tract-specific proteins that regulate sperm migration through the oviduct in mice. Proc Natl Acad Sci, 116, 18498-18506 (2019).                            
3. Lu Y, Oura S, Matsumura T, Oji A, Sakurai N, Fujihara Y, Shimada K, Miyata H, Tobita T, Noda T, Castaneda JM, Kiyozumi D, Zhang Q, Larasati T, Young SAM, Kodani M, Huddleston CA, Robertson MJ, Coarfa C, Isotani A, Aitken RJ, Okabe M, Matzuk MM,  Garcia TX, Ikawa M. CRISPR/Cas9-mediated genome editing reveals 30 testis-enriched genes dispensable for male fertility in mice.  Biol Reprod, 101, 501-511 (2019).    
4. Noda T#, Sakurai N#, Nozawa K, Kobayashi S, Devlin DJ, Matzuk MM, Ikawa M. Nine genes abundantly expressed in the epididymis are not essential for male fecundity in mice. Andrology, 7, 644-653 (2019).       
5. Tobita T, Kiyozumi D, Muto M, Noda T, Ikawa M. Lvrn expression is not critical for mouse placentation. J Reprod Dev, 65, 239-244 (2019).                                                                                                                                     
6. Noda T, Fujihara Y, Matsumura T, Oura S, Kobayashi S, Ikawa M. Seminal vesicle secretory protein 7, PATE4, is not required for sperm function but for copulatory plug formation to ensure fecundity. Biol Reprod, 100, 1035-1045 (2019).                                                                                                                                                              
7. Oura S, Miyata H, Noda T, Shimada K, Matsumura T, Morohoshi A, Isotani A, Ikawa M. Chimeric analysis with newly established EGFP/DsRed2-tagged ES cells identify HYDIN as essential for spermiogenesis in mice. Exp Anim, 68, 25-34 (2019). 

2018年以前                                                                                                                                    

1. Nishimasu H, Shi X, Ishiguro S, Gao L, Hirano S, Okazaki S, Noda T, Abudayyeh OO, Gootenberg JS, Mori H, Oura S, Holmes B, Tanaka M, Seki M, Hirano H, Aburatani H, Ishitani R, Ikawa M, Yachie N, Zhang F,  Nureki O. Engineered CRISPR-Cas9 nuclease with expanded targeting space. Science, 361, 1259-1262 (2018).         
2. Oji A#, Noda T#, Fujihara Y, Miyata H, Kim YJ, Muto M, Nozawa K, Matsumura T, Isotani A, Ikawa M. CRISPR/Cas9 mediated genome editing in ES cells and its application for chimeric analysis in mice. Sci Rep, 6, 31666 (2016).                                                                                                                                                         
3. Miyata H, Castaneda JM, Fujihara Y, Yu Z, Archambeault DR, Isotani A, Kiyozumi D, Kriseman ML, Mashiko D, Matsumura T, Matzuk RM, Mori M, Noda T, Oji A, Okabe M, Prunskaite-Hyyrylainen R, Ramirez-Solis R, Satouh Y, Zhang Q, Ikawa M, Matzuk MM.  Genome engineering uncovers 54 evolutionarily conserved and testis-enriched genes that are not required for male fertility in mice. Proc Natl Acad Sci, 113, 7704-7710 (2016).                                                                                                                                                                                 
4. Isono A, Tate S, Nakamura-Mori K, Noda T, Ishikawa S, Harayama H. Involvement of cAMP-dependent unique signaling cascades in the decrease of serine/threonine–phosphorylated proteins in boar sperm head. Theriogenology, 85, 1152-1160 (2016).                                                                                                       
5. Mizuno Y, Isono A, Kojima A, Arai MM, Noda T, Sakase M, Fukushima M, Harayama H. Distinct segment-specific functions of calyculin A-sensitive protein phosphatases in the regulation of cAMP-triggered events in ejaculated bull spermatozoa. Mol Reprod Dev, 82, 232-250 (2015).                                                                    
6. Kojima A, Matsushita Y, Ogura Y, Ishikawa S, Noda T, Murase T, Harayama H. Roles of extracellular Ca2+ in the occurrence of full-type hyperactivation in boar ejaculated spermatozoa pre-incubated to induce the cAMP-triggered events. Andrology, 3, 321-331 (2015).                                                                                       
7. Noda T, Minami K, Kojima A, Mizuno Y, Isono A, Sakase M, Fukushima M, Harayama H. Expression patterns of the activator type of cAMP responsive element modulator (CREM) in testicular germ cells of Japanese Black bulls. Theriogenology, 81, 1012-1020 (2014).                                                                                           
8. Mashiko D, Young SA, Muto M, Kato H, Nozawa K, Ogawa M, Noda T, Kim YJ, Satouh Y, Fujihara Y, Ikawa M. Feasibility for a large scale mouse mutagenesis by injecting CRISPR/Cas plasmid into zygotes. Dev Growth Differ, 56, 122-129 (2014).                                                                                                                                                
9. Noda T, Sakase M, Fukushima M, Harayama H. Novel approach for the detection of the vestiges of testicular mRNA splicing errors in mature spermatozoa of Japanese Black bulls. PLoS ONE, 8, e57296 (2013).                                                                                                                                                                                 
10. Harayama H, Noda T, Ishikawa S, Shidara O. Relationship between cyclic AMP-dependent protein tyrosine phosphorylation and extracellular calcium during hyperactivation of boar spermatozoa. Mol Reprod Dev, 79, 727-739 (2012).                                                                                                                                                           
11. Noda T, Shidara O, Harayama H. Detection of the activator cAMP responsive element modulator (CREM) isoform ortholog proteins in porcine spermatids and sperm. Theriogenology, 77, 1360-1368 (2012).              
12. Tate S, Nakamura K, Suzuki C, Noda T, Lee J, Harayama H. Evidence of the existence of adenylyl cyclase 10 (ADCY10) ortholog proteins in the heads and connecting pieces of boar spermatozoa. J Reprod Dev, 56, 271-278 (2010).

II．総説・図書

1. 野田　大地、伊川　正人．受精のメカニズム．受精とその障害, pp 1-8 (2022).                                                    
2. 野田　大地、伊川　正人．遺伝子改変マウスを用いた受精メカニズムの解明．スキルアップ ARTラボ　生殖補助医療の必須知識とテクニック, pp 125-132 (2022).                                                                                                
3. 野田　大地、伊川　正人．ゲノム編集マウスの作製と注意点. マウス・ラットモデル作製・解析プロフェッショナル, pp 20-30 (2021).                                                                                                                                              
4. 野田　大地、伊川　正人. ゲノム編集技術を用いたマウス作製と受精研究への応用. 最新のゲノム編集技術と用途展開, pp 213-226 (2021).                                                                                                                                             
5. Kim CR, Noda T, Okada Y, Ikawa M, Baek SH. Protocol for isolation of spermatids from mouse testes. STAR Protocols, 2, 100254 (2021).                                                                                                                                               
6. 野田　大地、芝　大、伊川　正人．国際宇宙ステーションでのマウス飼育により宇宙滞在が精子受精能力に及ぼす影響を解析. Isotope News, 770, pp26-29 (2020).                                                                                              
7. 野田　大地、大浦　聖矢、伊川　正人. CRISPR-Cas9を用いた疾患モデルマウスの作製―不妊モデルマウスを例に. 医学のあゆみ, 273, pp774-779 (2020).                                                                                                                   
8. 野田　大地、大浦　聖矢、伊川　正人. gRNA/Cas9複合体を用いたマウスでのゲノム編集, 実験医学別冊　完全版 ゲノム編集実験スタンダード, pp251-266 (2019).                                                                                                  
9. Noda T, Ikawa M. Physiological function of seminal vesicle secretions on male fecundity. Reprod Med Biol, 18, pp241-246 (2019). (Invited review)♦RMB Editor's Choiceに選ばれました                                                                
10. Harayama H, Minami K, Kishida K, Noda T. Protein biomarkers for male AI-subfertility in bovine spermatozoa. Reprod Med Biol, 16, pp 89-98 (2017).                                                                                                         
11. 野田　大地、伊川　正人. ゲノム編集技術による哺乳類精子の受精機構の解明. 日本胚移植学雑誌, 第39巻, 第3号, 151-157 (2017). (招待総説)                                                                                                                                              
12. Noda T, Oji A, Ikawa M. Genome Editing in Mouse Zygotes and Embryonic Stem Cells by Introducing SgRNA/Cas9 Expressing Plasmids. Methods Mol Biol, 1630, 67-80 (2017).                                                                 
13. 野田　大地、大字　亜沙美、伊川　正人. ゲノム編集技術を使った遺伝子改変マウスの作製. 実験医学別冊 マウス表現型解析スタンダード, pp74-82 (2016).                                                                                                            
14. 野田　大地、大字　亜沙美、伊川　正人. マウスでのゲノム編集. 実験医学増刊, All About ゲノム編集, 34, 第20号, pp111-118 (2016).                                                                                                                                                        
15. 野田　大地、伊川　正人. CRISPR/Casシステムを用いた遺伝子改変マウスの作製とその応用. 生産と技術, 67, pp37-42 (2015).                                                                                                                                                                     
16. 野田　大地、伊川　正人. 哺乳類におけるゲノム編集の現状と今後の展望. 脳21, 18, pp104-109 (2015).